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Règles modernes d'évaluation de la qualité des ovocytes et des embryons ce que les patients doivent savoir
Centre de PMA

Règles modernes d'évaluation de la qualité des ovocytes et des embryons ce que les patients doivent savoir

Au début de l'année 2025, l'ESHRE et l'ALPHA, deux organisations de premier plan dans le domaine de la médecine reproductive, ont mis à jour leurs recommandations relatives à l'évaluation morphologique (visuelle) des ovocytes et des embryons. Ces normes sont devenues essentielles pour la pratique clinique, car elles permettent aux embryologistes du monde entier d'utiliser une approche unifiée et de prédire plus précisément les résultats du traitement.

Les nouvelles recommandations ont remplacé la version de 2011. Au cours des dernières années, une quantité importante de données scientifiques a été accumulée et de nouvelles technologies sont apparues, ce qui a permis de préciser quels signes morphologiques sont réellement liés au potentiel de développement de l'embryon et lesquels ont une importance clinique limitée. Ces précisions ont servi de base aux critères mis à jour.

Notre blog sur les événements clés

Dans notre blog, nous avons couvert en détail l'événement ESHRE 2025 à Paris, où ont été présentées les innovations clés dans le traitement de l'infertilité.

Évaluation des ovocytes nouvelles approches

Les ovocytes sont des cellules extrêmement sensibles. Leur potentiel ne peut être évalué dans son intégralité, mais les caractéristiques morphologiques fournissent au médecin des repères pour prédire leur qualité. Les normes mises à jour proposent un système de description clair et structuré.

Paramètres clés :

  • Maturité de l'ovocyte. Les ovocytes au stade MII avec présence d'un globule polaire sont considérés comme les plus précieux. Ils sont prêts à être fécondés. Les ovocytes immatures (GV et MI) ne peuvent pas être utilisés, mais ils peuvent mûrir en laboratoire (technologie RESCUE-IVM). En 2025, l'ESHRE/ALPHA a pour la première fois clairement indiqué que ces ovocytes pourraient être utilisés en pratique clinique en cas de mauvais pronostic.
  • Cytoplasme. Normalement, il est transparent ou légèrement grisâtre. Auparavant, on pensait qu'une teinte foncée ou jaunâtre était un signe de stress cellulaire, mais de nouvelles données montrent qu'il n'y a pas de lien clair entre la couleur du cytoplasme et les résultats du développement de l'embryon.
  • Forme. La forme idéale est ronde. Cependant, les ovocytes ovales peuvent également se développer normalement.
  • Enveloppe brillante (zone pellucide). Auparavant, certaines modifications étaient considérées comme négatives, mais il est désormais souligné que toutes les anomalies de l'enveloppe n'ont pas d'incidence sur le développement ultérieur.
  • Complexe ovocyte-cumulus (COC). Son état aide à évaluer la maturité de l'ovocyte. Même les complexes atypiques sont désormais acceptables.

Ainsi, les nouvelles recommandations réduisent le niveau de subjectivité et permettent une utilisation plus large des cellules qui étaient auparavant considérées comme « douteuses ».

Comment détermine-t-on la réussite de la fécondation ?

16 à 18 heures après la fécondation, l'embryologiste évalue la formation du zygote. Principaux signes :

  • présence de deux pronucléus (2PN) — fusion correcte du matériel génétique ;
  • deux corps polaires — preuve de la fin de la méiose ;
  • symétrie et emplacement des PN ;
  • structure du cytoplasme sans inclusions pathologiques.

En 2025, l'accent est mis non seulement sur le déroulement de la fécondation, mais aussi sur la morphologie du zygote, ce qui permet de prédire plus précisément son développement.

Jours 2-3 division de l'embryon

L'embryon commence à se diviser activement : d'abord en deux cellules, puis en quatre et huit. Les embryologistes évaluent :

  • le nombre de blastomères : 3-4 le deuxième jour, 7-10 le troisième jour ;
  • la taille et la symétrie des cellules ;
  • le degré de fragmentation (particules entre les cellules) ;
  • la présence de multinucléation (plusieurs noyaux dans une même cellule) ;
  • Le début de la compaction.

Les recommandations de 2025 ont renforcé l'attention portée au pourcentage de fragmentation, à l'agrégation des cellules et au développement dynamique à l'aide des technologies time-lapse.

Jour 4 stade morula

L'embryon se transforme en un amas dense de cellules, des processus de compactage se produisent. Sont évalués :

  • la densité des connexions ;
  • l'uniformité de la structure ;
  • les premiers signes de formation d'une cavité.

Les embryons présentant une compactage complet ou des signes précoces de cavitation ont plus de chances de se développer jusqu'au stade blastocyste.

Jour 5 stade blastocyste

Ce stade est essentiel pour la sélection des embryons à transférer :

  • les embryons ayant atteint le stade blastocyste au 5e jour ont le plus grand potentiel ;
  • le degré d'expansion, la qualité du trophectoderme (TE) et de la masse cellulaire interne (ICM) sont évalués ;
  • Pour la première fois, l'effondrement spontané du blastocyste est systématiquement pris en compte comme facteur de pronostic.

Les nouvelles normes soulignent la flexibilité : même les embryons présentant certaines anomalies peuvent être viables.

Importance des recommandations actualisées

  • Évaluation plus précise des ovocytes et des embryons.
  • Introduction de critères pour le stade morula (jour 4) .
  • Priorité accordée à la morphologie du trophectoderme et des blastocystes.
  • Explication plus détaillée aux patients du choix de l'embryon.

À la clinique pma Barcelone NatuVitro, nous :

  • suivons strictement les protocoles actualisés de l'ESHRE/ALPHA et de l'ASRM ;
  • utilisons des données probantes et des technologies modernes ;
  • accompagnons les patients à chaque étape jusqu'à la naissance de l'enfant.

Les normes mises à jour rendent la FIV plus prévisible, plus sûre et plus efficace, augmentant ainsi les chances de réussite de la grossesse.

Liste des sources

  1. Ghevaria, H., SenGupta, S., Naja, R., Odia, R., Exeter, H., Serhal, P., Viñals Gonzalez, X., Sun, X., & Delhanty, J. (2022). Next Generation Sequencing Detects Premeiotic Errors in Human Oocytes. International Journal of Molecular Sciences, 23(2), 665. https://doi.org/10.3390/ijms23020665
  2. Hu, J., Ma, X., Bao, J. C., Li, W., Cheng, D., Gao, Z., Lei, A., Yang, C., & Wang, H. (2011). Insulin–transferrin–selenium (ITS) improves maturation of porcine oocytes in vitro. Zygote, 19(3), 191–197. https://doi.org/10.1017/s0967199410000663
  3. Rienzi, L., Vajta, G., & Ubaldi, F. (2010). Predictive value of oocyte morphology in human IVF: a systematic review. Human Reproduction Update, 17(1), 34–45. https://doi.org/10.1093/humupd/dmq029

Coticchio, G., Ahlström, A., Arroyo, G., Balaban, B., Campbell, A., De Los Santos, M. J., Ebner, T., Gardner, D. K., Kovačič, B., Lundin, K., Magli, M. C., Mcheik, S., Morbeck, D. E., Rienzi, L., Sfontouris, I., Vermeulen, N., & Alikani, M. (2025). Mise à jour du consensus d'Istanbul : consensus révisé de l'ESHRE/ALPHA sur l'évaluation morphologique statique et dynamique des ovocytes et des embryons. Human Reproduction. https://doi.org/10.1093/humrep/deaf021

Dr. Iñaki González-Foruria
Directeur Médical
Dr. Clàudia Forteza
Gynécologue spécialisée en reproduction assistée
Dr. Rebeca Beguería
Gynécologue spécialisée en reproduction assistée
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Directeur du laboratoire de FIV
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Médecin Anesthésiste
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